ChIP、ChIP-qPCR 与染色质富集分析全流程

检测转录因子、组蛋白修饰或染色质蛋白在目标基因组区域的富集,并为 ChIP-qPCR 或 ChIP-seq 提供可追溯样本。

实验目的

检测转录因子、组蛋白修饰或染色质蛋白在目标基因组区域的富集,并为 ChIP-qPCR 或 ChIP-seq 提供可追溯样本。

适用范围与实验要求

  • 样本:培养细胞
  • 样本:新鲜或冻存组织
  • 样本:原代细胞
  • 样本:低输入细胞样本(需专项优化)
  • 物种:人、小鼠、大鼠、其他具有参考基因组的物种
  • 难度与耗时:高级,约 2–4 天;测序分析另计
  • 安全:组织与细胞按来源管理;甲醛交联和有机试剂在通风条件下操作;扩增前后区域分离。

实验原理

细胞或组织经交联固定蛋白-DNA 复合物,染色质被剪切至合适片段后使用 ChIP 级抗体免疫富集,随后解交联、纯化 DNA,并以 qPCR 或测序评估特定位点或全基因组占据。

标准工作流程

  1. 优化交联并及时终止
  2. 裂解细胞或组织并释放细胞核
  3. 将染色质剪切至预设片段范围
  4. 保留 Input 并完成免疫沉淀
  5. 严格洗涤并洗脱复合物
  6. 解交联、蛋白消化并纯化 DNA
  7. 以阳性和阴性位点完成 ChIP-qPCR 质控
  8. 合格样本进入建库、测序和标准化分析

设备、试剂与耗材

  • 设备:超声破碎或酶切设备、冷冻离心机、旋转混合器与磁力架、qPCR 仪或 NGS 平台
  • 试剂:交联与终止试剂、染色质裂解与剪切缓冲液、ChIP 验证抗体、Protein A/G 磁珠、DNA 纯化与 qPCR/建库试剂
  • 耗材:低吸附管与滤芯枪头、超声兼容管、PCR 管板与封板膜、无核酸酶耗材

必需对照与 QC

  • Input DNA
  • 同型 IgG 对照
  • 已知阳性位点
  • 阴性基因组区域
  • 无抗体或珠子对照
  • Input 片段分布符合预设;IgG 背景低;阳性位点相对 Input 明显富集;阴性区域无异常富集;重复间趋势一致;测序文库复杂度和信噪比满足项目标准。

关键参数与结果解释

交联程度、细胞输入、片段分布、抗体特异性、抗体用量、磁珠容量、洗涤强度和 qPCR 引物效率是决定富集质量的核心变量。

富集结果反映特定条件下染色质占据或修饰状态。应采用 Input 或 IgG 标准化,并结合生物学重复、表达数据及独立方法验证,避免把单个位点富集直接解释为调控因果。

常见问题与排错

信号低时优化交联、剪切和抗体;背景高时降低抗体量并加强洗涤;片段过长或过短时调整超声能量与循环;重复性差时固定细胞数、批次和归一化流程。

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